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 0512-8957 3668 / 18013764755
文獻解讀 | ndrg2基因調(diào)控斑馬魚發(fā)育過程中毛細胞的形態(tài)發(fā)生和聽覺功能
來源:https://doi.org/10.3390/ijms241210002 | 作者:木芮生物 | 發(fā)布時間: 2023-09-16 | 800 次瀏覽 | 分享到:
感覺毛細胞(HCs)損傷是感覺神經(jīng)性聽力損失的主要原因,但由于許多潛在的耳聾基因尚未確定,其病理機制尚未完全了解。N-myc下游調(diào)控基因2 (ndrg2)通常被認為是腫瘤抑制基因和細胞應激反應基因,廣泛參與細胞增殖、分化、凋亡和侵襲,但其在斑馬魚HC形態(tài)發(fā)生和聽力中的作用尚不清楚。本研究通過原位雜交和單細胞RNA測序結(jié)果表明,ndrg2在耳部囊泡和神經(jīng)鞘的HCs中高度表達。Ndrg2功能喪失幼蟲表現(xiàn)為嵴細胞減少、纖毛縮短、神經(jīng)肥大和功能細胞減少,可通過顯微注射Ndrg2 mRNA進行挽救。此外,ndrg2缺乏引起對聲振動刺激的驚嚇反應行為減弱。在機制上,ndrg2突變體沒有檢測到HC凋亡和支持細胞的變化,并且HCs能夠通過阻斷Notch信號通路而恢復,這表明ndrg2參與了Notch介導的HC分化。綜上所述,本研究利用斑馬魚模型證明了ndrg2在HC發(fā)育和聽覺感覺功能中起著至關(guān)重要的作用,這為識別潛在的耳聾基因和HC發(fā)育的調(diào)控機制提供了新的見解。


雜志:International Journal of Molecular Sciences

影響因子:5.6(2022-2023)

年份:2023

通訊作者:Dong Liu

通訊作者單位:Nantong Laboratory of Development and Diseases, School of Life Sciences, Co-Innovation Center of Neuroregeneration, Nantong University, Nantong 226001, China


摘要

感覺毛細胞(HCs)損傷是感覺神經(jīng)性聽力損失的主要原因,但由于許多潛在的耳聾基因尚未確定,其病理機制尚未完全了解。N-myc下游調(diào)控基因2 (ndrg2)通常被認為是腫瘤抑制基因和細胞應激反應基因,廣泛參與細胞增殖、分化、凋亡和侵襲,但其在斑馬魚HC形態(tài)發(fā)生和聽力中的作用尚不清楚。本研究通過原位雜交和單細胞RNA測序結(jié)果表明,ndrg2在耳部囊泡和神經(jīng)鞘的HCs中高度表達。Ndrg2功能喪失幼蟲表現(xiàn)為嵴細胞減少、纖毛縮短、神經(jīng)肥大和功能細胞減少,可通過顯微注射Ndrg2 mRNA進行挽救。此外,ndrg2缺乏引起對聲振動刺激的驚嚇反應行為減弱。在機制上,ndrg2突變體沒有檢測到HC凋亡和支持細胞的變化,并且HCs能夠通過阻斷Notch信號通路而恢復,這表明ndrg2參與了Notch介導的HC分化。綜上所述,本研究利用斑馬魚模型證明了ndrg2在HC發(fā)育和聽覺感覺功能中起著至關(guān)重要的作用,這為識別潛在的耳聾基因和HC發(fā)育的調(diào)控機制提供了新的見解。

關(guān)鍵詞:ndrg2;毛細胞;聽力損失;斑馬魚;切口;細胞分化。

介紹

聽力損失會損害患者的身心健康,這可能是由多種因素引起的,包括遺傳缺陷、耳毒性藥物、大聲噪音和衰老。感覺毛細胞(HCs)是一種敏感的機械感受器,存在于聽覺器官中,介導聽覺和平衡感覺,它們的損傷是感覺神經(jīng)性聽力損失的最常見原因。由于哺乳動物內(nèi)耳HC損失的不可逆性和不可重復性,有必要揭示HC發(fā)展的關(guān)鍵基因和途徑,為人類聽力損失提供潛在的治療方法。毛細胞的發(fā)育和存活經(jīng)歷了前感覺細胞退出細胞周期,表達轉(zhuǎn)錄因子,最終分化為感覺毛細胞(HCs)和非感覺支持細胞。這一極其復雜且高度協(xié)調(diào)的過程受到多種關(guān)鍵因子的調(diào)控,如Atoh1和p27Kip1,以及包含Notch/Wnt/Atoh1、MAPK、PI3K/Akt、鈣通道和氧化應激/ROS的細胞信號通路。盡管在闡明HC發(fā)育和再生的分子機制方面已經(jīng)做了很多努力,但仍有許多潛在的耳聾基因有待發(fā)現(xiàn)和鑒定。

在聽覺研究中,鳥類、小雞、斑馬魚、小鼠和大鼠是常用的模式生物。哺乳動物具有與人類相似的典型耳蝸結(jié)構(gòu),但哺乳動物模型解剖程序復雜,通量低,在應用上存在一定障礙。斑馬魚雖然沒有耳蝸,但內(nèi)耳有聽覺器官,即耳囊和側(cè)線(LL)感覺系統(tǒng),這使其適合用作經(jīng)濟的非哺乳動物脊椎動物模型。耳小泡由三對半規(guī)管、耳室和耳囊組成,主要負責平衡和聽力功能。此外,魚類獨有的LL系統(tǒng)可以檢測聲音和水流,這些聲音和水流來源于原基在體表固定位置的遷移和沉積,形成成熟的神經(jīng)桿陣列。斑馬魚的感覺細胞被支持細胞緊密包圍,其結(jié)構(gòu)和功能與哺乳動物的內(nèi)耳相似。斑馬魚具有繁殖力強、易于遺傳操作和體內(nèi)成像等先天特點,在藥物耳毒性評價、耳保護劑篩選、聽力相關(guān)基因功能鑒定、HC發(fā)育再生機制研究等方面得到了廣泛的應用。

N-myc下游調(diào)控基因2 (NDRG2)屬于NDRG基因家族,廣泛參與細胞增殖、分化、凋亡以及細胞遷移和侵襲等細胞生物學過程。大量關(guān)于該基因功能的研究表明,NDRG2作為一種腫瘤抑制基因,在許多腫瘤問題中發(fā)揮著抗增殖和促凋亡的作用,如結(jié)直腸癌、胃癌、肝細胞癌等。同時,NDRG2蛋白水平與腫瘤分期和侵襲行為呈負相關(guān),可作為腫瘤進展和預后的生物標志物。近年來,NDRG2基因在許多類型的細胞和組織中都有促分化作用的報道。例如,在單核細胞和樹突狀細胞之間的分化中觀察到NDRG2基因的強烈表達。NDRG2還能促進bmp2誘導的成骨細胞分化和鈣化,促進結(jié)直腸癌的分化。此外,NDRG2主要表達于中樞神經(jīng)系統(tǒng)的星形膠質(zhì)細胞中,被認為是神經(jīng)系統(tǒng)疾病發(fā)生和發(fā)展過程中的重要調(diào)節(jié)因子,包括膠質(zhì)瘤、中風、神經(jīng)退行性疾病和精神疾病。同源基因ndrg2在斑馬魚早期胚胎的卵泡中特異性表達。此外,從我們之前對HCs單細胞RNA測序的研究數(shù)據(jù)中,我們知道ndrg2基因在斑馬魚的HCs中高度富集(GSE221471)。這些數(shù)據(jù)幫助我們合理地推斷ndrg2在一定程度上參與了HC的發(fā)育和聽覺系統(tǒng)的形成。不幸的是,ndrg2基因在聽覺器官發(fā)育中的作用程度仍然很大程度上是未知的。

本文探討了ndrg2在斑馬魚HC發(fā)育和聽感覺器官功能中的作用。建立ndrg2功能缺失模型,分析HCs的形態(tài)和功能表型。這項工作不僅加深了對ndrg2功能的認識,而且為HC發(fā)育的調(diào)控機制提供了新的認識。

材料和方法

斑馬魚品系和培養(yǎng)

轉(zhuǎn)基因斑馬魚品系Tg(Brn3c:mGFP)和野生型AB株在28.5°C下繁殖,并按照先前協(xié)議中描述的標準程序維持。產(chǎn)卵胚用E3培養(yǎng)基在28.5℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。為避免色素形成,在受精后20 h (hpf)用0.2 mM PTU (1-phenyl-2-thiourea, Sigma, Saint Louis, MO, USA)溶液替換胚胎培養(yǎng)基。胚胎發(fā)育階段按照標準準則進行分割。所有動物實驗均經(jīng)南通大學動物保護與利用委員會批準。許可編號S20210310-007,批準日期:2021年3月10日。

全載原位雜交

按照以下標準程序進行斑馬魚全載原位雜交(WISH)。利用設(shè)計的引物PCR擴增出531 bp的斑馬魚ndrg2基因cDNA片段(表S1),并將其克隆到pGEM-T-easy載體中。將pGEM-T-easy插入ndrg2片段線性化后,使用DIG RNA標記試劑盒(SP6 & T7) (Roche, #11175025910, Indianapolis, IL, USA),通過體外轉(zhuǎn)錄制備地高高素標記的ndrg2反義mRNA探針。隨后,經(jīng)過一系列處理,包括4% (w/v)多聚甲醛(PFA)固定、蛋白酶K消化和預雜交混合物孵育,不同發(fā)育階段的胚胎用ndrg2 mRNA探針雜交過夜。最后,采用堿性磷酸酶(AP)-偶聯(lián)抗地高igenin抗體(Roche, #11093274910)和AP-底物NBT/BCIP溶液(Roche, #11681451001)檢測ndrg2的表達。為了特異性識別pLL中的神經(jīng)鞘,eya1 mRNA探針按照上述方法制備,并設(shè)計了引物(表S1)。

Morpholino顯微注射及mRNA合成

為了抑制ndrg2的表達,我們從Gene Tools, Inc.設(shè)計并獲得了ndrg2特異性剪接阻斷morpholinos,其精確序列為(5 ' -ATC ATC TGA GAC TTA CTG TCC ATT C-3 ')。將morpholino粉末溶解并稀釋于無rnase的水中,得到終濃度為0.3 mM的工作液,用于后續(xù)操作。將約2 nL的morpholino工作液微量注射到單細胞期的斑馬魚胚胎中。為了檢驗morpholino的效率,收集注射了morpholino的胚胎提取RNA,然后進行反向轉(zhuǎn)錄cDNA。設(shè)計的引物位于外顯子1和外顯子8上(表S1),用于擴增位于外顯子4和內(nèi)含子4連接處的含有錯誤剪接靶點的片段。在拯救實驗中,首先通過體外轉(zhuǎn)錄合成外源ndrg2 mRNA。簡單地說,設(shè)計的引物ndrg2- mrna - bamhi - f和ndrg2- mrna - xbai - r(表S1)用于擴增包含整個ndrg2編碼序列的約1400 bp DNA。然后,利用SP6 mMESSAGE mMACHINE試劑盒(Invitrogen, #AM1340, Waltham, MA, USA)將插入擴增片段的pCS2+載體線性化,作為ndrg2 mRNA轉(zhuǎn)錄的模板。使用RNeasy Mini Kit (Qiagen, #74104, Hilden, Germany)純化后,將濃度為50 ng/μL的ndrg2 mRNA與morpholino或sgRNA共注射到單細胞期胚胎中進行拯救實驗。

CRISPR/ cas9介導的突變

通過CRISPR/ cas9介導的基因編輯技術(shù)生成ndrg2突變體斑馬魚。首先合成了靶向ndrg2外顯子2的單導RNA (sgRNA)。用含有ndrg2基因靶向位點(5 ' -GCA GGA GAT CGC CAT CAC GG-3 ')的正向引物和通用反向引物克隆sgDNA(表S1)。然后,以sgDNA為模板,利用MAXIscriptTM T7轉(zhuǎn)錄試劑盒(Invitrogen, #AM1314)進行體外轉(zhuǎn)錄獲得sgRNA。同時,利用線性化pXT7-Cas9質(zhì)粒和mMESSAGE mMACHINETM T7 Kit (Invitrogen, #AM1344)體外合成Cas9 mRNA。隨后,將300 ng/μL Cas9 mRNA和100 ng/μL ndrg2 sgRNA的混合物約2 nL微量注射到單細胞期斑馬魚胚胎中。利用設(shè)計的內(nèi)含子1和內(nèi)含子2上的測序引物(表S1),通過PCR檢測G0胚胎的ndrg2基因突變,并對擴增的含有靶向位點的片段進行測序。

FM4-64染色、抑制劑處理和細胞凋亡實驗

為了識別神經(jīng)鞘中的功能性HCs,我們進行了FM4-64染色實驗。將自由游動的幼蟲置于3 μM FM4-64活性染料(ex/em = 558/734 nm, Molecular Probe, #T13320, Eugene, OR, USA)中,室溫下避光孵育45 s。然后,去除染料溶液,用胚胎培養(yǎng)基輕輕沖洗后,直接成像。抑制Notch信號,ndrg2-mutant幼蟲在48個高通濾波器處理50μMγ分泌酶抑制劑LY411575 (# S2714 Selleckchem,休斯頓,德克薩斯州,美國)24 h為后續(xù)成像。細胞凋亡實驗檢測caspase-3活化信號。簡單地說,72 hpf的幼蟲在4℃4% PFA中固定過夜,然后在RT時用1% Triton X-100滲透0.5小時,然后在37℃用10%驢血清封閉1小時。隨后,幼蟲孵化了主要的雞多克隆抗體anti-GFP(1:50 0稀釋、Abcam # ab13970,新加坡)和一只兔子單克隆anti-cleaved caspase-3(1:50 0稀釋,春秋國旅,# 9664,新加坡)一夜之間在4°C,它是通過二次抗體檢測的Alexa FluorTM 488山羊anti-chicken lgG (H + L)(1:1000稀釋,表達載體,# - 11039)和一個Alexa FluorTM 555驢anti-rabbit lgG (H + L)(1:1000稀釋,表達載體,# - 31572),分別。最后,赫斯特33342年(10μg / mL,表達載體,# 62249)染料用于染色細胞的細胞核。

支持細胞增殖實驗

為了表征支持細胞的增殖,BrdU染色和免疫熒光實驗如下。將72 hpf的幼蟲置于10 mM BrdU溶液(Sigma-Aldrich, #B5002-5G, Saint Louis, MO, USA)中,在28.5℃下放置24小時。將96 hpf的幼蟲在4℃4% PFA中固定過夜,rt時用1% Triton X-100滲透0.5 h,然后在37℃2n HCl中浸泡0.5 h,然后在37℃用10%驢血清封閉1 h。用雞抗gfp多克隆抗體(1:500稀釋度,Abcam, #ab13970)、兔抗sox2多克隆抗體(1:500稀釋度,Abcam, #ab97959)和鼠抗brdu單克隆抗體(1:500稀釋度,Santa Cruz Biotechnology, #sc-32323, Dallas, TX, USA)分別標記HCs、支持細胞和增殖細胞。最后,分別用Alexa FluorTM 488羊抗雞igg (H + L)(1:1000稀釋度,Invitrogen, # a -11039)、Alexa FluorTM 555驢抗兔igg (H + L)(1:1000稀釋度,Invitrogen, # a -31572)和Alexa FluorTM 647驢抗小鼠igg (H + L)(1:1000稀釋度,Invitrogen, # a -31571)二抗進行一抗檢測。

前庭眼反射(VOR)測定

從南方科技大學獲得定制的VOR測試系統(tǒng),用于量化斑馬魚幼蟲頭部運動與地球水平軸的線性VOR。線性VOR測試的詳細程序如下。將斑馬魚幼蟲以背朝上的姿勢輕輕裝入幼蟲形的腔室中,尾部用5%甲基纖維素粘著,并在腔室上覆蓋一塊玻璃蓋片。在頭部區(qū)域添加E3胚培養(yǎng)基后,將室單元安裝在定量線性VOR的設(shè)備上。將幼蟲眼睛對準紅外攝像機中心后,平臺開始繞水平軸以30轉(zhuǎn)/分的速度來回旋轉(zhuǎn),攝像機記錄VOR。

驚嚇反應實驗

斑馬魚的運動行為通過驚嚇反應實驗進行測試,具體操作如下:在受精后5天,用塑料板連接微型振動器放置20只正常幼蟲,并用紅外數(shù)字視頻跟蹤系統(tǒng)監(jiān)測其游泳行為。180 Hz的兩種不同聲級(6或9 dB re.1 ms?2)的音調(diào)爆發(fā)應用于放大器以驅(qū)動振動器。設(shè)置并施加持續(xù)時間為30 ms、間隔時間為180 s的聲振動刺激。每個聲音振動刺激水平重復20次,記錄c型運動幼蟲在該刺激下的運動行為。最后,通過分析平均距離和峰值速度的運動典型參數(shù)來評價聲振刺激下幼蟲的驚嚇反應。

圖像采集與統(tǒng)計分析

WISH實驗的結(jié)果用立體顯微鏡(Olympus, MVX10, Tokyo, Japan)拍攝,其他實驗的表型讀數(shù)用共聚焦顯微鏡(Nikon, A1-DUT, Tokyo, Japan)掃描。成像時,用三卡因MS-222 (Sigma, #A5040)麻醉幼蟲,并在0.6%低熔點瓊脂糖中放置側(cè)位。使用Imaris X64軟件(9.0.1版本)重建三維圖像并調(diào)整對比度。為了區(qū)分Alexa FluorTM 555和Alexa FluorTM 647, Alexa FluorTM 647被涂成偽藍色,而前者被涂成紅色。GraphPad Prism(版本8.0.2)支持整個統(tǒng)計分析。所有數(shù)據(jù)重復三次以上,并以均數(shù)±均數(shù)標準誤差(SEM)表示。兩組比較采用未配對雙尾學生t檢驗,多組比較采用單因素方差分析。p值小于0.05 (p < 0.05)為差異有統(tǒng)計學意義。P < 0.05、P < 0.01、P < 0.001、P < 0.0001分別用“*”、“**”、“***”、“****”表示,“ns”表示無統(tǒng)計學意義。

結(jié)果

ndrg2基因在斑馬魚耳小泡和神經(jīng)鞘中高度保守表達

據(jù)報道,ndrg家族的成員廣泛存在于多個物種的后生動物中。斑馬魚ndrg2基因(基因ID: 494050;Zgc: 101847)包含16個外顯子,編碼368個氨基酸。為了更詳細地描述ndrg2基因的進化特征,我們分析了斑馬魚ndrg2基因及其在人類和其他哺乳動物中的同源基因的氨基酸序列,并采用Neighbor-Joining (NJ)方法構(gòu)建了系統(tǒng)發(fā)育樹。比對結(jié)果和系統(tǒng)發(fā)育樹顯示,ndrg2基因在哺乳動物低等脊椎動物中高度保守,在不同物種中序列同源性較高(圖1A,B)。

為了確定ndrg2的時空表達模式,我們使用地高辛標記的ndrg2 mRNA反義探針,通過全載原位雜交(WISH)技術(shù)追蹤了斑馬魚的發(fā)育過程。在24hpf時,ndrg2基因在耳小泡中顯著表達(圖1C,紅色虛線框),側(cè)視圖和背視圖均描繪了放大的細節(jié)(圖1(C′,C”))。在48和72 hpf時,不僅在耳小泡(圖1D,E,紅色虛線框)中檢測到ndrg2 mRNA的陽性信號,而且在后側(cè)線(pLL)的神經(jīng)鞘(圖1D,E,紅色箭頭)中也檢測到ndrg2 mRNA的陽性信號。放大后的圖顯示,ndrg2的高表達僅限于嵴、黃斑和神經(jīng)鞘的HCs區(qū)域(圖1(D′,D”,E′,E”))。此外,在胚胎發(fā)育過程中,還檢測了ndrg2在肌組、前腦和中樞神經(jīng)系統(tǒng)中有一定程度的表達(圖1C-E)。在前期工作中進一步分析HCs單細胞RNA測序數(shù)據(jù),發(fā)現(xiàn)ndrg2基因在嵴HC、黃斑HC和神經(jīng)鞘HC簇以及視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細胞和神經(jīng)元中高度富集,這與WISH的結(jié)果一致(圖S1)。ndrg2在斑馬魚耳小泡和聽覺神經(jīng)鞘中的高表達表明,ndrg2可能參與了斑馬魚聽覺器官的發(fā)育。

圖片

圖1 ndrg2基因在多種物種中都是保守的,在后外側(cè)線(pLL)的早期發(fā)育性耳囊泡和神經(jīng)鞘中高表達。(A)斑馬魚ndrg2(用紅星標記)、人類ndrg2和幾種哺乳動物同源基因的氨基酸序列比對。(B)利用Neighbor-Joining法和MEGA 6.0軟件建立了包含斑馬魚ndrg2(標記為紅星)和人類ndrg2及其在其他物種中的同源物的系統(tǒng)進化樹。(C-E)在斑馬魚胚胎24、48和72 hpf的側(cè)位片上,通過整胚原位雜交(WISH)檢測ndrg2 mRNA的表達譜。在早期胚胎發(fā)育過程中,ndrg2 mRNA的陽性信號主要集中在耳囊泡(用紅色虛線框標記)和pLL中的神經(jīng)鞘(用紅色箭頭標記)。斑馬魚內(nèi)耳結(jié)構(gòu)的示意圖見(D)。UO,橢圓囊耳石;SO,囊狀耳石;UM,橢圓囊黃斑;SM,囊狀黃斑;AC,前嵴;LC,側(cè)嵴;PC,后嵴。(C ',D ',E ')分別在24、48和72 hpf時,斑馬魚側(cè)視耳囊泡陽性信號的放大圖像。(C”)斑馬魚24 hpf時耳囊泡的背側(cè)視圖。(D”,E”)斑馬魚側(cè)位分別在48和72 hpf時pLL神經(jīng)鞘陽性信號的放大圖像(用紅色箭頭標記)。

敲低ndrg2基因可誘導壺腹嵴和pLL系統(tǒng)HC缺陷

為了探索ndrg2在斑馬魚聽覺器官發(fā)育中的作用,我們以轉(zhuǎn)基因系Tg(Brn3c:mGFP)為基礎(chǔ),通過顯微注射ndrg2特異性剪接阻斷morpholino,建立了ndrg2突變體。通過PCR檢測了morpholino顯微注射的效率,多個電泳條帶的結(jié)果表明,在目標位點成功地發(fā)生了有效的錯接(圖S2)。考慮到ndrg2的限制性表達主要在耳小泡的HC結(jié)構(gòu)域和pLL的神經(jīng)鞘中,我們首先觀察并記錄了耳小泡中三個典型的嵴HC簇(圖2A)。熒光圖像顯示,在72 hpf下,ndrg2突變體的前部、外側(cè)和后部的嵴HCs明顯減少,肌纖毛縮短(圖2D)。在96 hpf的ndrg2突變體中檢測到類似的表型(圖S3A),這表明嵴HCs的缺陷是由于ndrg2的特異性敲低而不是發(fā)育延遲。同時,統(tǒng)計結(jié)果顯示,在72和96 hpf下,ndrg2突變體的嵴HCs數(shù)量和肌纖毛平均長度均顯著降低,而立纖毛平均長度無顯著差異,這在觀察到的表型中也得到了很好的支持(圖2F-H和圖S3D-F)。進一步的研究發(fā)現(xiàn),在ndrg2敲除過程中,橢圓囊和囊狀耳石以及耳泡內(nèi)的橢圓囊黃斑HCs均未發(fā)生可檢測到的形態(tài)學變化(圖S4)。

為了研究ndrg2對pLL系統(tǒng)的影響,我們選擇eya1 mRNA探針和GFP分別特異性識別神經(jīng)瘤和HC簇。與正常幼蟲相比,不同發(fā)育階段的ndrg2突變體在pLL中顯示出較少的神經(jīng)鞘和HC簇(圖2B,C和圖S3B)。我們還顯示了pLL中神經(jīng)鞘和HC簇數(shù)量的一致統(tǒng)計結(jié)果(圖2I,J和圖S3G)。為了進一步描述ndrg2對神經(jīng)鞘中HCs的影響,我們用FM4-64活性染料標記功能性HCs, FM4-64活性染料可以通過功能性機械轉(zhuǎn)導通道快速進入成熟HCs。表性圖像和統(tǒng)計結(jié)果表明,在不同階段,在ndrg2形態(tài)中,pLL中單個神經(jīng)鞘中的HCs和功能性HCs的數(shù)量均減少(圖2E,I和圖S3C,H)。此外,外源性ndrg2 mRNA的顯微注射可以部分修復ndrg2突變體中出現(xiàn)的缺陷表型(圖2和圖S3)。總之,敲低ndrg2基因可以特異性地誘導耳囊泡和pLL系統(tǒng)的HC形態(tài)發(fā)生異常,包括嵴HCs減少、肌纖毛縮短、神經(jīng)肥大和功能性HCs減少。

圖片

圖2 敲低ndrg2基因?qū)е箩彰毎?HCs)顯著減少,肌纖毛縮短,神經(jīng)肥大減少以及功能性HCs減少。(A) 72 hpf時斑馬魚主要聽覺器官結(jié)構(gòu)示意圖,包括耳囊和后側(cè)線(pLL)系統(tǒng)。詳細描述了耳小泡和嵴HCs簇的結(jié)構(gòu),典型的3個嵴HCs簇包括前嵴毛細胞(ACHC)、側(cè)嵴毛細胞(LCHC)和后嵴毛細胞(PCHC)。本研究分析的pLL神經(jīng)鞘用紅色虛線框標記。(B)對照、ndrg2突變體和ndrg2 mRNA獲救組在72 hpf時pLL中HC簇(用紅色箭頭標記)的代表性熒光圖像。比例尺:500μm。(C)在72 hpf時,通過全載原位雜交(WISH)檢測對照、ndrg2突變體和ndrg2 mRNA獲救組的幼蟲中eya1 mRNA表達的側(cè)面圖。pLL神經(jīng)鞘的陽性信號用紅色箭頭表示。(D)對照組、ndrg2突變體組和ndrg2 mRNA獲救組在72 hpf下三簇嵴細胞的代表性熒光圖像。相應組的LCHC(白色虛線框)細節(jié)放大。比例尺:20μm。(E)對照組、ndrg2突變體組和ndrg2 mRNA獲救組在72 hpf時pLL單個神經(jīng)肥大細胞中HC簇(綠色)和功能性HC簇(紅色)的代表性放大顯微圖。比例尺:10μm。(F - h)對照組、ndrg2突變體組和ndrg2 mRNA獲救組嵴HCs數(shù)、72 hpf時肌纖毛和立纖毛平均長度的統(tǒng)計分析((F,G) n = 16;(H), n = 10)。(I)統(tǒng)計分析對照組、ndrg2 突變體組和ndrg2 mRNA獲救組在72 hpf時每個神經(jīng)肥大細胞的HCs數(shù)量和功能性HCs數(shù)量(n = 48)。(J,K)對照組、ndrg2突變體組和ndrg2 mRNA獲救組pLL HC簇數(shù)和神經(jīng)鞘數(shù)的統(tǒng)計分析((I), n = 16;(J), n = 13)。以上柱狀符號*和****分別代表p < 0.05和p < 0.0001。ns,無統(tǒng)計學意義。

敲低ndrg2基因?qū)е聦β曇粽駝哟碳さ姆磻袨闇p弱,但前庭-眼反射(VOR)無顯著差異

眾所周知,HCs是聽覺器官中至關(guān)重要的機械感受器,可以將外界振動刺激轉(zhuǎn)化為電生理信號,以感知聲音和平衡。HCs的喪失通常會導致聽力損失和前庭功能障礙。敲低ndrg2導致HCs表型缺陷;這種基因敲除是否會影響斑馬魚的聽覺和平衡功能還有待驗證。在這里,進行了定制的前庭-眼反射(VOR)測試,以檢查斑馬魚幼蟲在5 dpf時的線性VOR,由頭部運動到地球水平軸引起(圖S5A)。統(tǒng)計結(jié)果顯示,ndrg2缺乏的幼蟲眼動幅度無顯著差異(圖S5B),說明ndrg2敲低不能引起5 dpf時線性VOR的變化。

然后通過驚嚇反應實驗進一步探討ndrg2在斑馬魚聽力中的功能作用。采用兩次180 Hz的聲誘發(fā)刺激,計算并分析每次刺激后出現(xiàn)c形運動的幼蟲(圖3A,B)。結(jié)果表明,幼蟲的反應行為與刺激的大小有關(guān),而在5 dpf時,與野生型幼蟲相比,ndrg2型幼蟲對聲振動刺激的反應更為不敏感,這體現(xiàn)在平均距離和運動峰值速度的減少上(圖3C,D)。此外,體外注射ndrg2 mRNA在一定程度上可以彌補由于缺乏ndrg2而導致的幼蟲對聲振動刺激反應緩慢的行為(圖3C,D)。這表明ndrg2基因的敲低可能會損害斑馬魚幼體聽覺器官的功能。

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圖3 ndrg2基因的敲低導致斑馬魚在5 dpf時對聲音刺激的反應行為減弱。(A)驚嚇反應試驗和聲音振動刺激模式中使用的裝置示意圖。(B)分別提取了對照組、ndrg2 突變體組和ndrg2 mRNA獲救組在9 dB re.1 ms?2聲級180 Hz一次性刺激下幼蟲的c形運動軌跡。(C,D) 5 dpf時對照、ndrg2和ndrg2 mRNA獲救幼蟲在兩種刺激水平下的平均運動距離和峰值運動速度的統(tǒng)計分析(n = 20)。以上柱狀符號*、**、***、****分別代表p < 0.05、p < 0.01、p < 0.001、p < 0.0001。ns,無統(tǒng)計學意義。

敲除ndrg2基因?qū)е翲C發(fā)育障礙和對聲音振動刺激的感覺功能障礙

為了進一步證明ndrg2的發(fā)育和功能作用,首先,利用CRISPR/Cas9基因組編輯策略,基于Tg(Brn3c:mGFP)轉(zhuǎn)基因斑馬魚產(chǎn)生ndrg2敲除突變體。設(shè)計了一種靶向ndrg2基因外顯子2的sgRNA,并將其與Cas9 mRNA共注射到單細胞期胚胎中,用于CRISPR/Cas9介導的ndrg2編輯(圖4A)。ndrg2基因敲除的有效性是通過對含有目標位點的約410 bp基因組DNA片段進行測序來確定的。結(jié)果顯示,與野生型幼蟲相比,ndrg2突變體的靶位點后面出現(xiàn)了多峰曲線,表明靶向外顯子2的突變成功發(fā)生(圖4B)。

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圖4 在靶位點成功生成了CRISPR/ cas9介導的ndrg2突變。(A)斑馬魚ndrg2基因組結(jié)構(gòu)示意圖和CRISPR/Cas9系統(tǒng)中ndrg2特異性外顯子2的sgRNA。(B)與野生型斑馬魚相比,ndrg2突變體的靶位點發(fā)生了多個突變。

為了確定ndrg2基因敲除對HCs形態(tài)發(fā)生的影響,我們監(jiān)測和分析了壺腹嵴和pLL神經(jīng)鞘中HCs的發(fā)育過程。結(jié)果顯示,與ndrg2突變體的表型相似,ndrg2突變體在72 hpf時,三個典型的嵴HCs簇減少,并伴有肌纖毛縮短和立纖毛不變(圖5A)。同時,在ndrg2敲除過程中,在72 hpf時的幼蟲中,觀察到pLL中的HC簇明顯減少(圖5B)。pLL中單個神經(jīng)肥大的放大圖表明,與正常幼蟲相比,72 hpf時缺乏ndrg2的幼蟲表現(xiàn)出更少的HCs和功能性HCs(圖5C)。統(tǒng)計結(jié)果也與上述表型相符(圖5e - 1)。在96 hpf下,ndrg2突變體壺腹嵴和pLL系統(tǒng)的HCs也發(fā)生了類似的變化(圖S6)。此外,驚嚇反應實驗表明,ndrg2突變體對外部聲音振動刺激的反應脫敏,平均運動距離和峰值運動速度下降(圖5D,J,K)。此外,通過顯微注射ndrg2 mRNA可以部分恢復ndrg2突變體中出現(xiàn)的HCs的形態(tài)和功能缺陷(圖5和圖S6)。上述結(jié)果表明,ndrg2基因?qū)Π唏R魚HC的形態(tài)發(fā)生和聽覺器官的功能有深刻的影響。

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圖5 敲除ndrg2基因破壞了斑馬魚毛細胞(HC)的形態(tài)發(fā)生,導致對聲音振動刺激的感覺能力缺陷。(A)正常、ndrg2突變體和ndrg2 mRNA分別在72 hpf下獲救的幼蟲中典型的三簇嵴HCs的代表性熒光圖。側(cè)嵴毛細胞(LCHC)細節(jié)(白色虛線框標記)在相應的幼蟲中被放大。比例尺:20μm。(B)對照、ndrg2突變體和ndrg2 mRNA獲救組在72 hpf下后側(cè)線(pLL) HC簇(用紅色箭頭標記)的相襯和熒光圖像。比例尺:500μm。(C)分別從正常、ndrg2突變體和ndrg2 mRNA獲救的72 hpf的幼蟲中獲得的pLL中代表性神經(jīng)肥大的重疊熒光圖像。綠色和紅色信號分別代表hcc和功能性hcc。比例尺:10μm。(D)在5 dpf時,對照、ndrg2突變體和ndrg2 mRNA獲救的幼蟲分別在9 dB re.1 ms?2和180 Hz音調(diào)爆發(fā)的聲音刺激下的一次驚嚇反應行為中提取的游動軌跡。(E-I)對照組、ndrg2突變體組和ndrg2 mRNA獲救組在72 hpf時耳泡壺腹嵴和pLL神經(jīng)鞘中出現(xiàn)的HCs形態(tài)學表型統(tǒng)計分析((E-H), n = 10;(I), n = 30)。(J,K)對照組、ndrg2突變體組和ndrg2 mRNA獲救組在兩種水平刺激下的平均運動距離和峰值運動速度的統(tǒng)計分析(n = 20)。以上柱狀符號*、**、***、****分別代表p < 0.05、p < 0.01、p < 0.001、p < 0.0001。ns,無統(tǒng)計學意義)。

ndrg2基因缺失影響Notch信號通路中的HC分化

為了進一步闡明ndrg2缺乏導致HC丟失的細胞生物學機制,我們利用一種抗cleaved caspase-3的抗體和凋亡標記物檢測了ndrg2突變體的細胞凋亡信號。熒光圖像顯示,在正常幼蟲和ndrg2突變體中,沒有檢測到裂解的caspase-3與HCs共定位的信號,這表明細胞凋亡不是HC丟失的原因(圖6A)。眾所周知,HCs天生不能通過有絲分裂和支持細胞的直接轉(zhuǎn)分化來自主增殖和再生。ndrg2基因的缺失是否會破壞作為HCs重要來源的支持細胞的發(fā)育仍有待闡明。本實驗采用抗sox2抗體標記支撐細胞,并進行BrdU細胞增殖實驗。同時具有SOX2陽性和BrdU陽性信號的細胞代表增殖支持細胞。免疫熒光和統(tǒng)計學結(jié)果顯示,敲除ndrg2過程中支持細胞數(shù)量和增殖支持細胞數(shù)量無顯著差異(圖6B、E、F)。說明ndrg2的缺失不影響支持細胞的增殖和發(fā)育。因此,我們推測ndrg2突變體中出現(xiàn)的HC缺失表型是由于HC分化缺陷所致。人們普遍認為Notch介導的側(cè)抑制調(diào)節(jié)HC與支持細胞的分化,而Notch信號的抑制促進HCs與支持細胞的分化。為了驗證ndrg2基因是否通過Notch信號通路影響HC分化,我們使用Notch γ分泌酶抑制劑LY411575來治療ndrg2突變體。代表性圖表和統(tǒng)計結(jié)果顯示,通過阻斷Notch信號通路,ndrg2突變體pLL中單個神經(jīng)肥大中減少的HCs和功能性HCs可以明顯恢復(圖6C,D)。結(jié)果表明,ndrg2缺乏與Notch信號通路介導的HC分化密切相關(guān)。

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圖6 在Tg(Brn3c:mGFP)斑馬魚中,ndrg2基因的缺失通過Notch信號通路影響毛細胞(HCs)的分化,但不改變HCs的凋亡和支持細胞。(A) 72 hpf下正常和ndrg2突變體幼蟲HC凋亡檢測結(jié)果。免疫熒光圖像顯示在后側(cè)線(pLL)的單個HC簇中識別核(藍色),HC(綠色)和裂解的caspase-3信號(紅色)。比例尺:10μm。(B)正常和ndrg2突變體幼蟲支持細胞增殖實驗結(jié)果。96 hpf下顯示免疫熒光顯微圖,以鑒定單個pLL神經(jīng)肥大中的HC(綠色)、支持細胞(紅色)和增殖細胞(藍色)。用于檢測BrdU的Alexa FluorTM 647被涂成假藍色,以區(qū)別于Alexa FluorTM 555標記SOX2的紅色。重疊熒光圖像的最后一列紫紅色信號代表增殖的支持細胞。比例尺:10μm。(C)對照組、ndrg2突變體組和Notch抑制劑LY411575組在72 hpf時pLL單個神經(jīng)肥大HC簇(綠色)和功能性HC簇(紅色)的代表性圖像。比例尺:10μm。(D)對照組、ndrg2突變體組和Notch抑制劑LY411575組在72 hpf時每個神經(jīng)肥大細胞的HCs數(shù)量和功能性HCs數(shù)量的統(tǒng)計分析(n = 30)。(E,F)正常和ndrg2突變體幼蟲在96 hpf下每個神經(jīng)肥大的支持細胞和增殖支持細胞數(shù)量的統(tǒng)計分析(n = 30)。以上柱狀符號****表示p < 0.0001。ns,無統(tǒng)計學意義。

討論

N-myc下游調(diào)節(jié)基因(NDRG)家族由四個成員組成,分別是NDRG1、NDRG2、NDRG3和NDRG4。NDRG蛋白具有保守的NDR結(jié)構(gòu)域,包括α/β (α/β)水解酶基序,但不具有酶活性,并且具有57-65%相同的氨基酸序列。NDRGs保守地存在于多個物種的后生動物中。這在NJ方法構(gòu)建的NDRG2系統(tǒng)發(fā)育樹中得到了很好的驗證,斑馬魚的NDRG2基因與人類NDRG2的相似性超過80%(圖1A,B)。NDRG2的功能已被廣泛討論,越來越多的研究表明它在多種細胞生物學過程中發(fā)揮重要作用。NDRG2被認為是正常細胞在缺氧、誘導細胞死亡、抑制細胞增殖和蛋白質(zhì)合成等較低代謝過程等細胞應激刺激下激活的應激反應基因。作為腫瘤抑制因子,NDRG2在不同腫瘤的抗增殖、促凋亡、抑制侵襲轉(zhuǎn)移等方面發(fā)揮著重要作用。研究發(fā)現(xiàn),NDRG2作為腦星形膠質(zhì)細胞的標記蛋白與多種神經(jīng)系統(tǒng)疾病有關(guān)。近年來,不同的研究報道NDRG2在許多類型的細胞和組織中是一個與分化相關(guān)的基因。研究人員指出,NDRG2調(diào)節(jié)樹突狀細胞從單核細胞分化和細胞因子的產(chǎn)生,如IL-10。NDRG2促進GATA-1的表達,誘導巨核細胞向紅細胞分化。此外,NDRG2能夠促進bmp2誘導的成骨細胞分化和抑制破骨細胞分化,并在分化體中控制椎體規(guī)格。與未分化的成肌細胞相比,NDRG2在分化的肌管中的表達更高,這也表明了它在成肌細胞生長和分化中的作用。此外,NDRG2不僅能促進結(jié)直腸癌的分化,還能在腫瘤微環(huán)境中減少巨噬細胞向腫瘤相關(guān)巨噬細胞的分化。

斑馬魚ndrg家族由6個平行成員組成,包含ndrg1a、1b、2、3a、3b和4,表達于斑馬魚胚胎的代謝需要器官,如腦、腎和心臟。研究表明,ndrg2基因在斑馬魚胚胎發(fā)育早期主要局限于耳囊、腦、視網(wǎng)膜和體體中表達。我們的WISH結(jié)果也觀察到類似的ndrg2表達模式(圖1C-E)。然而,區(qū)別在于,在48 hpf和72 hpf時,斑馬魚胚胎pLL的神經(jīng)鞘中檢測到了ndrg2的陽性信號(圖1D,E)。這一發(fā)現(xiàn)在我們之前的工作中被HCs單細胞序列的結(jié)果所證實,該結(jié)果表明ndrg2在簇0和簇7的神經(jīng)鞘HCs中高度富集(圖S1)。為深入了解ndrg2潛在的組織特異性功能提供了更好的整體和系統(tǒng)表達譜。目前,ndrg2在神經(jīng)系統(tǒng)、視網(wǎng)膜、體細胞等特異表達組織中的功能已被廣泛研究。不幸的是,ndrg2在聽覺器官中的作用仍然知之甚少??紤]到ndrg2基因在斑馬魚耳小泡和神經(jīng)鞘中特異高表達,我們推測ndrg2基因可能參與了斑馬魚HCs的發(fā)育。為了驗證這一假設(shè),首先,我們成功構(gòu)建了ndrg2突變體(圖4和圖S2)。壺腹嵴和pLL系統(tǒng)均出現(xiàn)了HCs的缺陷表型,包括嵴HCs減少、肌纖毛縮短、神經(jīng)鞘減少以及功能性HCs,這些缺陷可通過ndrg2 mRNA拯救實驗部分恢復(圖2、圖5和圖S3、圖S6)。然而,并不是所有的HCs在斑馬魚體內(nèi)都會出現(xiàn)形態(tài)上的異常。例如,在沒有ndrg2的情況下,橢圓囊斑HCs和耳石沒有可檢測到的形態(tài)學差異(圖S4)。

我們知道,HCs是一種重要的機械感受器,負責感知聲音、保持平衡和重力,它的喪失可能導致斑馬魚的聽覺和前庭功能障礙。因此,我們在5 dpf時對斑馬魚幼體進行常規(guī)行為測試VOR和驚嚇反應,分別評估ndrg2對前庭和聽覺功能的影響(圖3、圖5和圖S5)。據(jù)報道,線性和角加速度都可以誘發(fā)VOR。斑馬魚感知線性加速度和重力的耳石器官在5 dpf后成熟,而感知旋轉(zhuǎn)角加速度的半規(guī)管在35 dpf后成熟。本研究的VOR測試系統(tǒng)由南方科技大學提供,旨在檢測重力與耳石器官交角變化引起的斑馬魚幼蟲線性VOR。本研究的線性VOR檢測主要反映與耳石器官相關(guān)的前庭功能。在ndrg2突變體中,線性VOR沒有檢測到變化,這與觀察到的耳石和橢圓囊斑HCs的正常表型一致(圖S4和S5)。盡管垂直插入半規(guī)管壺腹的嵴HCs在ndrg2突變體中表現(xiàn)出缺陷表型(圖2和圖S3),但在5 dpf時的幼蟲線性VOR試驗中,它們的前庭相關(guān)功能無法體現(xiàn)和檢測。驚跳反應是一種與HCs的聽覺功能密切相關(guān)的行為,包含了魚體在受到聲刺激后10 ms內(nèi)彎曲成典型的“C”形,然后是一個小的反向曲線和快速游動的典型過程。驚嚇反應可由5 dpf及整個成年期具有相似強度閾值和頻率范圍的聲音刺激觸發(fā),這為聽力變化提供了可靠的評估。斑馬魚的側(cè)線可以感知到200赫茲的水流和低頻波,而內(nèi)耳可以探測到100赫茲以上的振動。在本研究中,應用了180 Hz的兩種不同聲級(6或9 dB re.1 ms?2)的音調(diào)爆發(fā)。在ndrg2突變體和突變體中觀察到的驚嚇反應行為減弱(圖3和圖5),反映了內(nèi)耳和側(cè)線對聲音振動刺激的協(xié)同結(jié)果。這可能與pLL中嵴間質(zhì)細胞減少和神經(jīng)鞘間質(zhì)細胞減少有關(guān)(圖2、圖5、圖S3和圖S6)。然而,由于成像技術(shù)上的困難,本研究沒有對內(nèi)耳另一個重要的聽覺組成部分囊狀黃斑進行研究,這可能是無法充分認識HCs形態(tài)變化與功能變化之間關(guān)系的障礙??偟膩碚f,驚嚇反應實驗的結(jié)果表明,ndrg2基因調(diào)節(jié)了斑馬魚的聽覺感覺功能。一份出版物報道,當暴露在模擬重力環(huán)境中時,斑馬魚的ndrg2上調(diào),這意味著ndrg2與感覺行為相關(guān)。

HCs的發(fā)育是一個極其復雜、高度協(xié)調(diào)的過程,受一系列關(guān)鍵因子的調(diào)控,涉及多條信號通路,如Notch/Wnt/Atoh1、MAPK、PI3K/Akt、鈣通道和氧化應激/ROS等。經(jīng)典且保守的Notch信號通路在肝細胞的發(fā)育和再生中發(fā)揮重要作用。研究表明,Notch介導的側(cè)向抑制決定了感覺上皮細胞的命運,并通過激活Notch信號抑制相鄰的感覺上皮細胞向同一類型細胞分化,進而向另一種類型細胞分化,即支持細胞分化,從而調(diào)節(jié)感覺上皮細胞和支持細胞的分化。已知HCs是通過有絲分裂或支持細胞直接轉(zhuǎn)分化而再生的。研究人員發(fā)現(xiàn),γ-分泌酶抑制劑抑制Notch信號時,支持細胞可被誘導轉(zhuǎn)分化為HCs。在這里,敲除ndrg2基因?qū)е翲Cs缺失,但未檢測到cleaved caspase-3的細胞凋亡信號(圖6A),這表明HC的凋亡并不是導致其下降的原因。同時,支持細胞作為HCs的重要來源,其有絲分裂不受ndrg2缺失的影響,反映了增殖的支持細胞數(shù)量和形態(tài)的不顯著變化(圖6B,E,F)。此外,用γ-分泌酶抑制劑LY411575阻斷Notch信號通路有助于恢復ndrg2突變體中丟失的HCs(圖6C,D),表明ndrg2與Notch信號通路有關(guān)。一項研究發(fā)現(xiàn),ndrg2與Notch信號通路相關(guān),調(diào)控損傷后損傷邊界的皮質(zhì)神經(jīng)發(fā)生。一項新的研究報道,ndrg2通過Notch信號通路參與神經(jīng)肥大細胞受損HCs的再生?;谶@些發(fā)現(xiàn),我們推測ndrg2可能是Notch信號通路上游負調(diào)控基因,影響HCs的分化。ndrg2可能是HC分化相關(guān)基因,其缺陷觸發(fā)Notch激活,抑制支持細胞向HCs分化,最終導致HCs丟失。

結(jié)論

在本研究中,我們通過WISH繪制了ndrg2的時空表達模式,并檢測了ndrg2在耳囊泡和pLL神經(jīng)鞘中的特異性表達。ndrg2突變體和ndrg2突變體的嵴毛細胞和神經(jīng)鞘的形態(tài)和功能缺陷,可以通過聯(lián)合注射外源性ndrg2 mRNA來挽救。同時,對缺乏ndrg2的幼體進行驚嚇試驗,對聲音振動刺激脫敏。此外,阻斷Notch信號通路可以挽救ndrg2突變體中未檢測到的HCs凋亡和支持細胞的改變,這表明ndrg2與Notch介導的HCs分化相關(guān)。綜上所述,本研究首次證實了ndrg2調(diào)控斑馬魚發(fā)育過程中參與Notch信號通路的HCs形態(tài)發(fā)生和聽覺感覺功能。斑馬魚作為一種常見的脊椎動物模式生物,在聽力損失研究中表現(xiàn)出獨特的優(yōu)勢,包括易于在體染色和成像、不需要復雜的解剖操作、易于基因操作、適合快速大規(guī)模表型篩查等。報道的ndrg2在聽覺器官發(fā)育中的功能作用為發(fā)現(xiàn)和識別潛在的耳聾基因提供了一條途徑。這項工作不僅加深了對ndrg2功能的理解,而且為HC發(fā)育的調(diào)控機制提供了新的見解。

基金:這項研究得到了國家自然科學基金項目(2018YFA0801004;81870359)、江蘇省高等學校自然科學基金項目(22KJB320020)、江蘇省“創(chuàng)新創(chuàng)業(yè)博士”項目、江蘇省學生創(chuàng)新創(chuàng)業(yè)培訓平臺項目(202210304129Y)、無錫市科學會軟科學研究課題(KX-22-C186)、無錫市衛(wèi)健委項目(Q202229)的支持。
原文:Wang C, Wang X, Zheng H, et al. The ndrg2 Gene Regulates Hair Cell Morphogenesis and Auditory Function during Zebrafish Development[J]. International Journal of Molecular Sciences, 2023, 24(12): 10002.

原文地址:https://doi.org/10.3390/ijms241210002

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